HRM-qPCR:从熔解曲线中“读”出基因型

September 18, 2026
HRM-qPCR:从熔解曲线中“读”出基因型

高分辨率熔解曲线分析(High Resolution Melting, HRM)是对PCR扩增后产物DNA片段熔解曲线的图形特征分析,用于识别核酸序列中的遗传变异,根据微小的序列差异区分不同核酸种类,从而实现突变扫描、基因分型和甲基化分析等。HRM分析是一种非破坏性方法,因此在熔解分析完成后,还可对所关联的扩增子进行后续表征,例如采用凝胶电泳或测序技术。不过,高分辨率熔解检测需要具备优异热稳定性和灵敏度的实时荧光定量PCR检测系统,以及专为HRM设计的软件。

HRM的工作原理:从"染色"到"读色"

其核心原理在于:通过实时监测PCR产物在升温过程中双链DNA解链为单链DNA时荧光信号的变化,来生成独特的熔解曲线。即使是单个碱基的差异(SNP),也会导致DNA双链稳定性的微小改变,从而在熔解曲线上呈现出可被识别的差异。具体流程分为三步:

  1. PCR扩增:在反应体系中加入能特异性结合双链DNA(dsDNA)的饱和荧光染料(如EvaGreen、LC Green等"第三代染料")。该结合染料与双链DNA结合时荧光强度高,游离状态下荧光较弱。
  2. 缓慢升温熔解:PCR结束后,仪器以极高的温度分辨率从低温升到高温,dsDNA逐渐解链为单链,染料脱落,荧光信号随之下降,形成一条熔解曲线(图1)。
  3. 数据分析:通过熔解温度(Tm)和曲线形状的差异,判断样品间的序列变异。Tm(熔解温度)的定义是:50%的DNA为双链、50%为单链时的温度。它取决于扩增产物的长度、GC含量和碱基互补性——任何一个碱基的改变,都会让Tm发生微小的位移。
HRM-qPCR:从熔解曲线中“读”出基因型 图1. JLM HRM原始熔解曲线(Melt Curve)。它展示了随着温度升高,嵌入DNA双链的饱和染料被释放,导致荧光强度(RFU)逐渐下降的过程。低温度下DNA为双链,染料大量结合,荧光高;到达Tm附近时双链剧烈解离,荧光骤降;高温度下DNA完全单链化,荧光降至基线。不同序列的DNA,其Tm值和曲线形态会有细微差别。紫色:GG;黄色:AA;红色:het。

HRM分析与标准熔解曲线分析在三个方面存在差异:

  • 化学体系——HRM分析使用更高浓度、荧光亮度更强的染料,例如EvaGreen、LCGreen、SYTO9等;
  • 仪器设备——HRM分析要求仪器能以更精细的温度分辨率采集荧光数据,需要达到0.02~0.1℃;
  • 分析软件——HRM分析需要更先进的软件支持,这类软件采用更复杂的荧光算法与绘图方式。

在HRM分析中,软件会根据原始熔解曲线将这些信号自动归一化为相对值1.0和0(图2),从而消除背景荧光差异,提高检测细微熔解曲线差异的能力。无论是熔解温度的偏移还是曲线形状的变化,均可用于识别序列差异。纯合等位基因/序列变异通常表现为HRM熔解曲线上观察到的温度(横轴)偏移(紫色和黄色曲线);而杂合子通常通过由碱基对错配产生的熔解曲线形状变化来表征(红色曲线),这是由于部分野生型和变异链之间的异源双链退火不稳定所致。不过,HRM数据常常以差异曲线的形式呈现,以便直观放大同一基因型内不同群体熔解曲线之间的差异(图3)。

HRM-qPCR:从熔解曲线中“读”出基因型 图2. JLM HRM归一化熔解曲线。为了消除不同样本间初始荧光强度的差异,软件会自动对原始数据进行归一化处理。它会将熔解前的荧光信号设为1.0,熔解后的信号设为0。归一化后,所有曲线都被拉到同一尺度上,使得不同样本间的曲线形状和Tm值差异变得一目了然,便于直接比较。同源纯合子(野生型/突变型纯合)表现为曲线沿温度轴左右平移——Tm高了往右移,Tm低了往左移。杂合子因为形成了错配的异源双链,稳定性下降,曲线不仅位移,还会变形(出现"肩部")。紫色:GG;黄色:AA;红色:het。 HRM-qPCR:从熔解曲线中“读”出基因型 图3. JLM HRM差异曲线。软件会选择一个样本作为参照(通常是野生型纯合子),然后将其他所有样本的归一化曲线与之相减,差异曲线为近似直线表示样品与参考品序列一致,差异曲线出现明显偏离表示样品存在序列变异。如果样本是另一种纯合子(如突变纯合子),其曲线会整体平移,在差异图上表现为一个向上或向下的峰。由于杂合子PCR产物中会形成不稳定的异源双链,其熔解曲线形状会发生显著改变,在差异图上呈现出独特的“W”形或“M”形特征峰,极易识别。紫色:GG;黄色:AA;红色:het。


三张图的关系:原始曲线看"有没有",归一化曲线看"差多少",差异曲线看"与谁不同"。

做好HRM实验的三个关键点

HRM对实验条件相当"挑剔",以下几点直接决定数据质量:

  • 染料要"饱和":必须使用EvaGreen、LC Green等第三代饱和染料。早期的SYBR Green因抑制PCR只能低浓度使用,熔解过程中染料会"跳跃"重分布,导致分辨率严重下降。
  • 扩增子要"短":尽可能<100 bp,已知SNP位点周围更推荐38-50 bp,短片段能放大单碱基差异带来的Tm位移。
  • 仪器要"稳":需要热稳定性好、灵敏度高的实时荧光定量PCR系统,配合专用HRM分析软件;温度分辨率要高,确保数据采集密度。